典型医用纳米材料诱导细胞线粒体和内质网生物学效应的研究

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典型医用纳米材料诱导细胞线粒体和内质网生物学效应的研究
论文目录
 
中文摘要第1-8页
英文摘要第8-12页
英文缩略语词汇表第12-20页
第一章 前言第20-29页
  1.1 超顺磁氧化铁纳米颗粒(SPIONs)诱导的细胞生物学效应相关研究第21-24页
    1.1.1 SPIONs诱导细胞生物学效应第22-23页
    1.1.2 SPIONs诱导动物体内生物学效应第23-24页
  1.2 碲化镉量子点(CdTe-QDs)诱导的生物学效应相关研究第24-27页
    1.2.1 CdTe-QDs诱导细胞生物学效应第25-26页
    1.2.2 CdTe-QDs诱导动物体内生物学效应第26-27页
  1.3 本研究的目的和意义第27-29页
第二章 材料和方法第29-50页
  2.1 实验材料第29-34页
    2.1.1 细胞第29页
    2.1.2 实验动物第29页
    2.1.3 主要试剂与耗材第29-33页
    2.1.4 主要仪器第33-34页
  2.2 检测指标和方法第34-49页
    2.2.1 纳米材料表征第34页
    2.2.2 细胞培养、冻存与复苏第34-35页
    2.2.3 细胞活力检测第35-36页
    2.2.4 Western Blot检测蛋白表达水平第36-40页
    2.2.5 qRT-PCR检测目的基因mRNA转录水平第40-43页
    2.2.6 免疫荧光检测相关蛋白的分布及表达第43-44页
    2.2.7 普鲁士蓝染色检测细胞内铁元素第44页
    2.2.8 石墨炉原子吸收法(GF-AAS)定量检测金属元素含量第44-45页
    2.2.9 ATP含量检测第45页
    2.2.10 线粒体膜电位检测(JC-1法)第45-46页
    2.2.11 细胞内Ca~(2+)检测第46页
    2.2.12 线粒体ROS检测(Mito-Sox)第46页
    2.2.13 报告基因检测第46页
    2.2.14 DNA microarray及数据分析第46-47页
    2.2.15 动物样本收集及生化指标检测第47页
    2.2.16 动物组织HE染色和免疫组化实验(IHC)第47-49页
    2.2.17 小动物荧光成像第49页
  2.3 统计学方法第49-50页
第三章 结果第50-92页
  3.1 SPIONs靶向细胞METC诱导肝癌细胞抗肿瘤作用的研究第50-70页
    3.1.1 SPIONs材料表征第50-51页
    3.1.2 SPIONs对癌细胞与正常细胞的存活率影响的差异第51页
    3.1.3 癌细胞和正常细胞对SPIONs摄取差异及胞内分布第51-54页
    3.1.4 SPIONs诱导癌细胞线粒体功能紊乱第54-58页
    3.1.5 SPIONs诱导正常细胞和癌细胞凋亡水平的差异第58-59页
    3.1.6 SPIONs诱导不同细胞抗氧化能力的差异第59-64页
    3.1.7 SPIONs诱导癌细胞METC基因表达的改变第64-70页
  3.2 CdTe-QDs诱导肾细胞ERS介导自噬的生物学效应研究第70-92页
    3.2.1 CdTe-QDs材料表征第70页
    3.2.2 CdTe-QDs诱导肾细胞毒性第70-71页
    3.2.3 CdTe-QDs定位内质网诱导内质网肿胀第71-73页
    3.2.4 CdTe-QDs诱导HEK细胞ERS及自噬第73-79页
    3.2.5 细胞摄取CdTe-QDs的含量第79-83页
    3.2.6 Cd元素在小鼠体内分布第83-84页
    3.2.7 CdTe-QDs对小鼠肾脏组织形态学和功能的影响第84-86页
    3.2.8 CdTe-QDs诱导小鼠肾脏ERS及自噬第86-88页
    3.2.9 ERS报告基因应用于纳米材料的筛选第88-92页
第四章 讨论第92-106页
  4.1 纳米材料的生物医学应用及安全性问题第92-94页
  4.2 纳米材料对细胞线粒体的影响第94-99页
  4.3 纳米材料对内质网的影响第99-102页
  4.4 纳米材料安全性评价方法第102-106页
第五章 结论与展望第106-108页
  5.1 结论第106页
  5.2 展望第106-108页
参考文献第108-120页
附录第120-124页
致谢第124-125页

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